Меню

Антибиотики для котят при хламидиозе

Хламидиоз кошек

Автор: Обухов И.Л., доктор биол. наук, зав. лаб. молекулярной диагностики, ВГНКИ, г. Москва

Опубликовано: 26 сентября 2015

Хламидиоз кошек – инфекционное заболевание, обусловленное внутриклеточными паразитами из рода Chlamydia, Субстратом их действия являются эпителиальные ткани и клетки иммунной системы животных.

Перспективный метод диагностики возбудителя – использование ПЦР. Обсуждаются меры по обеспечению надежной системы контроля заболеваемости хламидиозом кошек и котов, даются рекомендации для владельцев животных.

Хламидиоз имеет необычайно широкое распространение среди кошек, что связано с наличием неконтролируемого резервуара возбудителя инфекции в природе. Это создает постоянную угрозу возникновения спорадических случаев или вспышек заболевания, приводящих к патологии респираторного тракта и воспроизводительных органов животных.

Клиническими проявлениями хламидиоза являются конъюнктивиты, риниты, при поражении верхних дыхательных путей – хронические, реже острые бронхиты и пневмонии, а также аборты, бесплодие, рождение мертвого или нежизнеспособного потомства.

Больные хламидиозом кошки могут стать источником возбудителя инфекции и для человека, т. е. заболевание носит характер зооантропоноза. В последние десятилетия за рубежом описаны многочисленные случаи такого заражения. Подтверждено это и нашими данными.

Хламидии – уникальные микроорганизмы. Из-за малого размера, зависимости собственной репликации от клетки хозяина и внутрицитоплазматической локализации их первоначально считали вирусами. Однако некоторое сходство с грамотрицательными бактериями, а также чувствительность к ограниченному числу антибиотиков в настоящее время позволяет отнести их к высокоспециализированным облигатным внутриклеточным паразитам.

Возбудителями хламидиоза кошек являются представители рода Chlamydia, вида Chi. psittaci, который характеризуется различными клиническими формами протекания, частой хронизацией процесса инфекции или ее латентным (скрытым) течением.

Первоначальным морфологическим субстратом для развития хламидийиой инфекции являются эпителиальные ткани, контактирующие с внешней средой и обладающие высокой скоростью обновления. Хламидии преимущественно поражают клетки цилиндрического эпителия, выстилающего слизистую оболочку конъюнктивы, области глотки, тонкого отдела кишечника, желудка, уретры, канала шейки матки и прямой кишки. Проникнув в эпителиальную клетку, паразиты проявляют специфическую активность и нейтрализуют важнейший защитный механизм клетки хозяина, обеспечивая себе возможность для дальнейшего размножения. Однако, в процессе эволюции паразиты приспособились к размножению не только в эпителии (иначе существовала бы высокая вероятность утраты микроба организмом), но также в клетках иммунной системы животного.

В случае генерализованной инфекции (у кошек она наблюдается достаточно редко), когда возбудитель с током крови разносится практически по всем внутренним органам, суставам, головному и спинному мозгу (явление хламидемии), болезнь приобретает летальную форму.

Как правило, в чистом виде хламидиозная инфекция существует только в начальной стадии развития. Учитывая, что хламидии часто поражают открытые полости организма – места скопления других микроорганизмов (нередко условно патогенных), становится очевидной и их провоцирующая роль. Являясь внутриклеточными паразитами, они создают благоприятные условия для развития другой микрофлоры за счет прямого воздействия на клетки слизистых оболочек. Вследствие этого приобретает силу смешанная или вторичная инфекция, протекающая значительно тяжелее заболевания, вызываемого одним возбудителем.

Анамнестические данные, полученные нами в результате обследования 257 кошек и 112 котов с различной патологией респираторного и урогениталыюго тракта позволили установить, что заражение хламидиозом происходит воздушно-капельным и половым путем. Элементарные тельца (инфекционные единицы хламидии) были выявлены у 49% кошек и 42,8% котов. Начало заболевания часто характеризуется незначительным повышением температуры тела животного. Это обычно не влияет на состояние их аппетита и общее самочувствие, несмотря на явный конъюнктивальный дискомфорт. В большинстве случаев конъюнктивит развивается с одного глаза, но уже через некоторое время заболевание поражает и второй глаз. Заболевание может продолжаться от нескольких дней до нескольких месяцев и нередко принимает хроническое течение. Острая форма конъюнктивита при хламидиозе, как правило, имеет короткий инкубационный период (5-10 суток) и начинается с серозных выделений из глаз. Затем, вследствие вторичной бактериальной или вирусной инфекции, выделения становятся слизисто-гнойными. При этом наблюдается гиперемия конъюнктивы: она приобретает ярко-красный или кирпично-красный цвет, обычно более интенсивный в сводах; бывают видны отдельные сосуды; иногда отмечается отек конъюнктивы (хемоз).

В случае хронической формы наблюдают бархатистую или слабую гиперемию конъюнктивы век, формирование в уголках глаз мелких зернышек, отделяемое скудное. В ряде случаев может развиться фолликулярный конъюнктивит.

Обследование 126 кошек и 48 котов с хламидиозным конъюнктивитом и ринитом показало, что 57,9% и 35,4% (соответственно) из них имеют также патологию урогенитального тракта хламидиозной природы.

Наиболее опасным осложнением хронической хламидиозной инфекции является бесплодие. Взаимное заражение происходит при спаривании животных: у кошек инфицированный канал шейки матки является персистирующим резервуаром хламидии и служит источником возбудителя инфекции для котов, а у последних возбудитель локализуется в семенниках и выделяется со спермой. И в том и другом случае оплодотворения не происходит.

Читайте также:  Когда котенок становится спокойнее

Следует отметить, что не всегда обнаружение хламидии в конъюнктиве подтверждалось выявлением их в урогенитальном тракте и наоборот. Внедрение хламидии в мочеполовой тракт в половине случаев сопровождается клиническими проявлениями; чаще заболевание протекает бессимптомно и носит скрытый характер.

Клинические признаки болезни зависят от ряда факторов: вирулентности возбудителя, длительности пребывания хламидии в организме, топографии поражения, выраженности местных и общих реакций макроорганизма.

Одной из форм проявления хламидиоза является заболевание котят – хламидиозный неонатальный конъюнктивит. В этом случае заражение происходит либо трансплацентарно (через плаценту), либо во время родов – при прохождении плода через родовые пути инфицированной матери. Хламидии проникают в любые открытые полости плода, вызывая его инфекционную патологию. Наиболее часто при этом поражается конъюнктивальный мешок и носовая часть глотки, в результате чего у новорожденных развиваются конъюнктивит и хламидийная респираторная инфекция, впоследствии переходящая в атипичную пневмонию.

Особенностью болезни, значительно усложняющей эпидемиологический надзор за ней, является ее хроническое течение и стертая клиническая картина. В связи с этим, важнейшим этапом в системе проведения ветеринарно-санитарных мероприятий, а также специфического лечения кошачьих хламидиозов является максимально ранняя и точная лабораторная диагностика возбудителя.

До недавнего времени одним из лучших прямых методов выявления хламидий считался метод с использованием клеточных культур. Данный подход является общепризнанным эталоном для других методов, однако имеет недостатки, существенно затрудняющие его широкое использование в практических лабораториях ветеринарной службы. Он трудоемок, занимает много времени, предусматривает наличие живого возбудителя в анализируемом образце, что значительно снижает его возможности.

Сегодня перспективным подходом к прямой диагностике инфекций следует считать специфическую амплификацию нуклеиновых кислот in vitro (в пробирке) и, в частности, наиболее разработанный вариант такой амплификации – полимеразную цепную реакцию (ПЦР). Всего за несколько часов метод ПЦР позволяет производить изолированное умножение (амплификацию) любого гена или его фрагмента во много миллионов раз. По чувствительности и специфичности ПЦР превосходит все известные биохимические и иммуноферментные методы лабораторной диагностики инфекций, так как позволяет определять единичные копии возбудителя в исследуемых образцах.

Нами впервые в СНГ зарегистрированы ПЦР тест-системы для выявления хламидиоза у птиц и млекопитающих, а также наборы для многих других инфекционных заболеваний животных. Поскольку спонтанное самоизлечение хламидиоза маловероятно, и даже при отсутствии симптомов болезни возможны серьезные осложнения, заболевание требует грамотного, активного лечения. В последние годы средства диагностики и терапии стали достаточно эффективными, но, несмотря на это, распространенность кошачьего хламидиоза не снижается.

В настоящее время нами разработана и утверждена вакцина против хламидиоза пушных зверей, кошек и собак «ХламиКон». Препарат изготовлен из высокоиммуногенных штаммов возбудителя, впервые выделенных в России от больных хламидиозом кошек и собак и культивируемых на перевиваемой культуре клеток. Широкие клинические испытания отечественной вакцины показали, что она обладает более высокой иммуногенностыо, чем ее зарубежные аналоги. Мероприятия, позволяющие обеспечить надежную систему контроля за хламидиозом кошек и котов, должны предусматривать: вакцинопрофилактику, обеспечение ранней диагностики заболевания, проведение раннего и эффективного лечения больных животных, профилактическое обследование всех племенных особей. Владельцам животных, участвующих в разведении, а также активно посещающих выставки, следует (по возможности) регулярно проводить обследование своего животного; перед вязкой убедиться в наличии заключения о результатах исследования на данную инфекцию противоположной стороны; рекомендуется избегать контактов питомца с животными, не вызывающими у вас доверия (поскольку инфекция передается воздушно-капельным путем). Обследование на хламидиоз следует проводить в компетентных учреждениях, так как в противном случае возможно получение недостоверных результатов.

Источник

Сравнительная характеристика схем лечения хламидийного конъюнктивита у кошек.

Лечение животных в группах отличалось использованием системного антибиотика:

  1. животные из первой группы получали перорально антибиотик Азиромицин по 10 мг/кг 1 раз в день в первый день, по 5 мг/кг во 2, 3, 4, 5 дни и накладывали 1% глазную Тетрациклиновую мазь в течение 14 дней 3-4 р/д;
  2. животные из второй группы получали перорально только препарат Азитромицин по 10 мг/кг 1 раз в день в первый день, по 5 мг/кг во 2, 3, 4, 5 дни;
  3. кошки из третьей группы получали препарат тетрациклиновой группы Доксициклин по 10 мг/кг 3 недели и накладывали 1% глазную Тетрациклиновую мазь в течение 14 дней 3-4 р/д.
Читайте также:  Если тебя мужчина называет котенком

При изучении терапевтической эффективности в комплексном лечение хламидийного конъюнктивита у кошек с применением препарата Азиромицина per os в сочетании с 1% глазной Тетрациклиновой мазью установлена более высокая терапевтическая эффективность по сравнению с комплексом Доксициклин per os в сочетании с 1% глазной Тетрациклиновой мазью (Табл. 6).

Так к 3-му дню лечения индекс тяжести воспаления в изучаемой группе оценивался в 4,4+ 0,44 балла, в группе сравнения- в 6,8+ 0,3 балла (р

Исследования выявили невысокую терапевтическую эффективность препарата Азитромицин per os в указанной дозе (группа исследования) при его изолированном применении для лечения хламидийного конъюнктивита у кошек по сравнению с комплексом Азитромицин per os в указанной дозе в сочетании с 1% глазной Тетрациклиновой мазью (группа сравнения) (Табл. 6).

Так к 3-му дню лечения индекс тяжести воспаления в группе исследования снизился незначительно (6,9+ 0,6 балла) ( Табл. 6), в то время как в группе сравнения равнялся 4,4+ 0,44 балла.

К 8-му дню лечения индекс тяжести воспалительной реакции в группе исследования составил 5,1 + 0,5 балла ( в группе сравнения 1,73+ 0,2 балла ).

Малую эффективность изолированного препарата подтверждает сроки исчезновения выделений и блефароспазма 14,2+ 0,3 дня в группе исследования и 4,8+ 0,2 дня в группе сравнения (Табл. 6). Сроки исчезновения гиперемии слизистой глаза в группе исследования 17,8+ 0,3 дня достоверно больше, в контрольной группе 9,53+ 0,3 дня. Вследствие этого длительность лечения в изучаемой группе (19,9 + 0,4 дня) значительно и достоверно превышала таковую в группе сравнения 11,4+ 0,2 дня (Табл.6).

    1. Сравнение терапевтической эффективности трех схем лечения хламидийного конъюнктивита

Проведя исследование терапевтической эффективности препарата Азитромицин, мы доказали его высокую эффективность в сочетании с местным использованием тетрациклиновой мази и целесообразность применения в комплексном лечении хламидийного конъюнктивита у кошек. А также низкую терапевтическую эффективность изолированного использования препарата Азитромицин.

Длительность лечения хламидийного конъюнктивита у кошек при использовании комплекса Азитромицин+ тетрациклиновая мазь составляет 11,4+ 0,19 дней, при лечении комплексом Доксициклин+ тетрациклиновая мазь 16,2+ 0,2 день (Табл. 6) и 19,9+ 0,4 (Табл. 6) дней при изолированном применении Азитромицин.

По окончании курса антибиотиков у всех 30 кошек с хламидийным конъюнктивитом для оценки общего клинического состояния брали кровь на общий клинический (Табл.7) и биохимический анализы (Табл.8).

Таблица 7. Морфологические показатели крови кошек с хламидийным конъюнктивитом после лечения

Показатели Ед. измерения Значение Норма
1 Эритроциты млн/мкл 5,6+0,3 5,2-10,9
2 Лейкоциты тыс/мкл 12,3+0,2 5,5-18
3 Гемоглобин г/л 128,8+0,8 90-167
4 Тромбоциты тыс/мкл 374+7,8 300-630
5 Гематокрит % 29,8+0,3 26-48
6 Эозинофилы % 0,5+0,1 0-10
7 Нейтрофилы п/я % 1,6+0,3 0-3
8 Нейтрофилы с/я % 53,4+1,3 48-72
9 Моноциты % 2,3+0,2 1-4
10 Лимфоциты % 42,2+1,4 20-55

Как видно из представленных данных в таблице 7 по окончании курса приема системных антибиотиков у всех кошек показатели морфологии крови установились в пределах нормы, что говорит о хорошей противовоспалительной эффективности антибиотиков (Азитромицин и Доксициклин) для лечения хламидийной инфекции.

Таблица 8. Биохимические показатели крови кошек с хламидийным конъюнктивитом после лечения антибиотиками Азитромицин и Доксициклин

Показатели Ед. измерения Азитромицин Доксициклин Норма
1 АЛТ ЕД 88,8+ 1,61 135,5+ 0,89 0-75
2 АСТ ЕД 66,1+1,9 94,4+ 1,8 9-30
3 Мочевина Ммоль/л 7,03+0,14 5,86+ 0,26 4-10,5
4 Креатинин Мкмоль/л 79,8+2,67 93+ 1,6 90-152
5 Глюкоза Ммоль/л 4,3+0,08 4,08+ 0,1 3,3-6,3
6 Общ.белок г/л 62,6+1,58 61,7+ 1,67 54-77
7 Альбумин г/л 29+0,69 30,7+ 1,1 25-37
8 Билирубин общ. Мкмоль/л 8,4+0,39 9,44+ 0,54 3-12
9 Билирубин прямой Мкмоль/л 1,7+0,12 1,86+ 0,22 0-5,5
10 Щелочная фосфатаза Ед 42,1+2,06 47,5+1,28 4-85

Повышение активности ферментов АСТ и АЛТ как при использовании Азитромицина, так и при использовании Доксициклина указывают на токсическое воздействие данных препаратов на печень. Однако, в связи с более длительным курсом приема Доксициклина (3 недели) по сравнению с приемом Азитромицина (5 дней) и разными дозами действующих веществ, повышение печеночных ферментов значительно выше при использовании первого препарата и не является равноценным. Остальные биохимические показатели в пределах нормы.

Клинически у 2 % кошек при использовании препарата Доксициклин наблюдалось снижение аппетита и кашицеобразный стул, проходившие через несколько дней при назначении Смекты по 1/6 пакетика 2-3 раза в день. Других симптомов не выявлялось. Побочных эффектов при использовании Азитромицина не выявлялось.

Читайте также:  Малыши для девочек котята

Таким образом, эпифора у кошек зачастую является результатом инфекционного конъюнктивита: при хламидиозе усиливается слезная продукция, а при герпесвирусной инфекции слезная продукция в норме или даже уменьшена, однако нарушена работа дренажного носослезного канала. В работе установлены основные причины эпифоры у кошек, что существенно дополняют описанные ранее возможные причины появления эпифоры у кошек(Noller C., Henninger W., 2006). Выявленная породная предрасположенность к врожденной форме эпифоры у брахицефалических пород кошек подтверждает данные литературы, приобретенная эпифора по причине инфекции возрастной и породной предрасположенности не имеет. У вакцинированных животных отмечен высокий риск возникновения эпифоры по причине инфекционного конъюнктивита. То есть применение комплексной ежегодной парентеральной вакцины не защищает ни одно животное полностью от вирусных заболеваний. Возможно, для выработки более стойкого иммунитета необходима разработка местных назальных или конъюнктивальных вакцин, и использование их совместно с парентеральной вакциной. Особенно это актуально в случае большого скопления животных в питомниках или домашних хозяйствах, где существуют повышенные риски заражения вирусными агентами и постоянная циркуляция. Проведя исследование терапевтической эффективности препарата Азитромицин, мы доказали его высокую эффективность в сочетании с местным использованием глазной 1% тетрациклиновой мази и целесообразность применения в комплексном лечении хламидийного конъюнктивита у кошек. А также низкую терапевтическую эффективность изолированного использования препарата Азитромицин.

  1. ВЫВОДЫ
  1. Инфекционный конъюнктивит у кошек, вызванные Chlamydophila felis и FHV-1, являются часто встречаемым заболеванием и в 62 % случаев являются причиной временной или постоянной эпифоры у кошек. Среди кошек с эпифорой FHV-1 выявляется в 41 % случаев, Chlamydophila felis – в 7,6 % случаев, одновременно FHV-1 и Chlamydophila felis- в 13,4 %.
  2. Установлена высокая степень риска возникновения эпифоры у вакцинированных кошек. Так среди вакцинированных кошек эпифора по причине инфекционного конъюнктивита встречается в 42,5 % случаев.
  3. Подтверждено, что врожденная форма эпифоры встречается в 20,4 % случаев и проявляется с рождения у брахицефалических пород кошек (персидская, британская, шотландская вислоухая, экзотическая). Все причины приобретенной формы эпифоры не имеют породной и возрастной предрасположенности.
  4. Определены основные клинические признаки герпесвирусного и хламидийного конъюнктивита у кошек с эпифорой. Так главными различиями между герпесом и хламидиозом являются: выраженный отек конъюнктивы без изменений в общем состоянии животного при хламидиозе, а при герпесе — выраженная гиперемия конъюнктивы с возможностью развития язвы на роговице, вовлечении верхних дыхательных путей и возможной гипертермией.
  5. Изучена возможность использования антибиотика Азитромицина в офтальмологической практике для комплексного лечения хламидийного конъюнктивита у кошек в дозировке 10 мг/кг per os в 1-ый день и по 5 мг/кг 1 раз в день во 2, 3, 4, 5 дни.
  6. Впервые проведена клиническая и лабораторная оценка терапевтической эффективности препарата Азитромицин в дозе 10 мг/кг в 1-ый день и по 5 мг/кг 4 дня при его изолированном использовании и в сочетании с 1% глазной Тетрациклиновой мазью в течение 14 дней.
  7. Установлено, что длительность лечения хламидийного конъюнктивита у кошек при использовании Азитромицин per os в дозе 10 мг/кг в 1-ый день и по 5 мг/кг 4 дня и 1% глазной Тетрациклиновой мази в течение 14 дней сокращается на 4,8 дня по сравнению с комплексом Доксициклин per os 10 мг/кг 3 недели и глазной 1% Тетрациклиновой мазью 14 дней.
  8. Клинико-лабораторные исследования выявили невысокую эффективность изолированного применения препарата Азитромицина при хламидийном конъюнктивите и нецелесообразность его применения без местного лечения.
  1. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
  1. Разработан комплексный метод диагностики хламидийного конъюнктивита у кошек, включающий в себя данные анамнеза, клинический осмотр, офтальмологический осмотр с учетом самых современных методик, данных ПЦР-диагностики, цитологического исследования мазка с конъюнктивы, а также бактериологический посев.
  2. Изучена и подобрана терапевтически эффективная схема лечения хламидийного конъюнктивита у кошек препаратом Азитромицин.
  3. Подготовлена техническая документация для рассмотрения возможности регистрации Азитромицина в качестве лекарственного средства для ветеринарного применения.
  1. СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

По теме диссертации опубликовано 2 печатные работы в журналах, включенных в список научных журналов Высшей аттестационной комиссией России:

  1. Гречиха А.Ю. Частота распространения Feline Herpesvirus-1 и Chlamydophila felis у кошек с эпифорой/ Гречиха А.Ю., Уша Б.В.// «Ветеринария».- 2012, №4, с.55-56
  2. Гречиха А.Ю. Диагностика эпифоры у кошек/ Гречиха А.Ю.// «Ветеринария».- 2012, № 6, с.58-59

Источник

Adblock
detector